Inoculación en soja (Glycine max (L.) Merr.) con BPCV (bacterias promotoras de crecimiento vegetal) y hongos micorricicos bajo ambiente controlado en un suelo de Alto Paraná

Autores/as

DOI:

https://doi.org/10.32480/rscp.2026.e3128

Palabras clave:

inoculación, hongos micorricícos, soja, promotores de crecimiento vegetal

Resumen

El nitrógeno (N), y el fósforo (P) son macronutrientes esenciales para el crecimiento y productividad de las plantas, sin embargo, no siempre están disponibles para ellas en el suelo. La disponibilidad de estos nutrientes puede incrementarse a través del uso de bacterias promotoras de crecimiento vegetal (BPCV) en conjunto con hongos micorrícicos, que favorecen la fijación biológica del nitrógeno y la solubilización del P. El estudio tuvo como objetivo evaluar la influencia de la inoculación de bacterias promotoras de crecimiento vegetal (BPCV) y hongos micorrícicos sobre la producción de soja en ambiente protegido. El experimento se estructuró bajo un diseño completamente al azar y se evaluaron seis tratamientos: T1 testigo sin inoculación,T2 BPCV 1 (Bradyrhizobium japonicum, Azospirillum brasilense y Pseudomonas fluorescens), T3 BPCV 2 (diferenciado del BPCV 1 por la concentración de unidades formadoras de colonias), T4 Hongos micorrícicos arbusculares (HMAs), T5 BPCV 1 (Bradyrhizobium japonicum, Azospirillum brasilense y Pseudomonas fluorescens) + Hongos micorrícicos arbusculares (HMAs), y T6 BPCV 2 + Hongos micorrícicos arbusculares (HMAs). Los tratamientos fueron dispuestos en cuatro repeticiones, y un total de 24 unidades experimentales. Semillas de soja (Glycine max (L.) Merr.), variedad RR1, fueron inoculadas y sembradas en macetas con suelo recolectado de Yguazú, Alto Paraná, Paraguay. El experimento se condujo bajo condiciones controladas en San Lorenzo, departamento Central, Paraguay. Las variables evaluadas fueron: altura de planta, número de vainas, masa seca de parte aérea, longitud de raíz, masa seca parte radicular, número de nódulos por planta, y masa seca de nódulos por planta. Los resultados fueron analizados estadísticamente mediante el análisis de varianza. No se observaron diferencias estadísticas significativas entre los tratamientos para las variables evaluadas. Los valores promedio fueron de 46 cm para la altura de planta, 11 vainas por planta, 47 cm para la longitud de raíz, 14 g y 3 g para la masa seca de la parte aérea y radicular, respectivamente, y 17 nódulos por planta, con una masa seca de nódulos de 1 g por planta. En las condiciones en que se condujo el experimento, se concluye que el uso de bacterias promotoras de crecimiento vegetal y micorrizas generaron una respuesta limitada, que no fue lo suficientemente pronunciada como para ser considerada estadísticamente significativa.

Descargas

Los datos de descarga aún no están disponibles.

Referencias

1. Duarte Sánchez DD, Guerrero Barreto R, Chung CKK. Importancia de la producción de soja en la economía paraguaya en el año 2021. Rev Cient Estud Investig. 2022;11(1):146-154. Disponible en: https://doi.org/10.26885/rcei.11.1.146

2. Havlin JL, Tisdale SL, Nelson WL, Beaton JD. Soil fertility and fertilizers: an introduction to nutrient management. 9º ed. Upper Saddle River: Pearson; 2023.

3. Sarandón SJ, Flores CC. Agroecología: bases teóricas para el diseño y manejo de agroecosistemas sustentables. La Plata: Universidad Nacional de La Plata; 2014. Disponible en: https://centroemmanuel.org/wp-content/uploads/2016/04/Documento-Agroecologia-Sarandon.pdf

4. Castillo P, Molina R, Andrade A, Vigliocco A, Alemano S, Cassán F. Phytohormones and other plant growth regulators produced by PGPR: the genus Azospirillum. En: Cassán F, Okon Y, Creus CM, editores. Handbook for Azospirillum: technical issues and protocols. Bern: Springer; 2015. p. 115-138. Disponible en: https://link.springer.com/chapter/10.1007/978-3-319-06542-7_7

5. Triplett EW, Sadowsky MJ. Genetics of competition for nodulation of legumes. Annu Rev Microbiol. 1992;46:399-428. Disponible en: https://doi.org/10.1146/annurev.mi.46.100192.002151

6. Méndez M, Mercado E, Pineda E. Azospirillum: una rizobacteria con uso potencial en la agricultura. Biológicas. 2017;16(1):11-18. Disponible en: https://www.biologicas.umich.mx/index.php/biologicas/article/viewFile/172/pdf

7. Hungria M, Rondina ABL, Nunes ALP, Araujo RS, Nogueira MN. Seed and leaf-spray inoculation of PGPR in Brachiarias (Urochloa spp.) as an economic and environmental opportunity to improve plant growth, forage yield and nutrient status. Plant Soil. 2021;463:171-186. Disponible en: http://www.bashanfoundation.org/contributions/Hungria-M/46.%202021Seed%20and%20Hungria.pdf

8. Ferrera Rodríguez O, Alarcón González BA, Caballero Reyes GE, Hernández Melchor D, Alarcón A, Ferrera Cerrato R, et al. Characterization of bacteria with plant growth promotion and antagonistic activity associated to rhizosphere and phyllosphere of Platanus mexicana and Persea shiedeana trees natural hosts of ambrosial beetle. 2021. Disponible en: https://doi.org/10.21203/rs.3.rs-3146806/v1

9. Hungria M, Nogueira MA, Araujo RS. Co-inoculación de semillas de soja con Bradyrhizobium spp. y Azospirillum brasilense: una nueva herramienta biotecnológica para mejorar el rendimiento y la sostenibilidad. Am J Plant Sci. 2015;6(6):811-817. Disponible en: https://doi.org/10.4236/ajps.2015.66087

10. Bashan Y, de-Bashan LE. How the plant growth-promoting bacterium Azospirillum promotes plant growth: a critical assessment. Adv Agron. 2010;108:77-136. Disponible en: https://doi.org/10.1016/S0065-2113(10)08002-8

11. Lucy M, Reed E, Glick BR. Applications of free-living plant growth-promoting rhizobacteria. Antonie Van Leeuwenhoek. 2004;86(1):1-25. Disponible en: https://doi.org/10.1023/B:ANTO.0000024903.10757.6e

12. Rodríguez JEMH, Otiniano CCR, Asencio P, Mogollón PC, Medina MEC. Co-inoculación de Rhizophagus irregularis y Rhizobium sp. en Phaseolus vulgaris L. var. canario (Fabaceae), «frijol canario». Arnaldoa. 2019;26(3):991-1006. Disponible en: https://doi.org/10.22497/arnaldoa.263.26309

13. López Gorostiaga O, González Erico E, de Llamas P, Molinas A, Franco S, García S, et al. Estudio de reconocimiento de suelos, capacidad de uso de la tierra y propuesta de ordenamiento territorial preliminar de la región Oriental. Asunción: MAG, SRNMA, BM, PRUT; 1995. p. 112-118. Disponible en: https://www.geologiadelparaguay.com/Estudio-de-Reconocimiento-de-Suelos-Regi%C3%B3n-Oriental-Paraguay.pdf

14. Sotelo CE, Leconte MC, Iglesias MC. Efecto de la inoculación al cultivo antecesor sobre la nodulación de la soja, en suelos de desmonte. Agrotecnia. 2010;20:13. Disponible en: https://doi.org/10.30972/agr.020354

15. Cedeño Saavedra DA, Martínez HFC, Rosero NC, Cuenca FFG, Fernández RG, Moreira ÁVC. Rizobacterias que promueven el desarrollo e incremento en productividad de Glycine max L. Cienc Tecnol. 2017;10(1):7-15.

16. Casas M, Pérez J, Jerez F, Fajardo-Molina S, Morcillo-Blanco C, Fernández-Pascual M. Respuesta de soya (Glycine max (L.) Merr.) a la inoculación con Azospirillum y Bradyrhizobium. Rev Colomb Cienc Hortíc. 2019;13(2):174-185. Disponible en: https://www.redalyc.org/journal/1932/193261173002/html

17. Castro Barquero L. Incremento de la fijación biológica de nitrógeno y el crecimiento de la soya (Glycine max) mediante el uso de hongos solubilizadores de fósforo. Agron Costarricense. 2024;48(1):93-109. Disponible en: https://doi.org/10.15517/rac.v48i1.59136

18. Cassán F, Perrig D, Sgroy V, Masciarelli O, Peña C, Luna V. Azospirillum brasilense Az39 and Bradyrhizobium japonicum E109 promote seed germination and early seedling growth independently or co-inoculated in maize (Zea mays L.) and soybean (Glycine max L.). Eur J Soil Biol. 2009;45:28-35.

19. Marchesotti MA. Respuesta del cultivo de soja a la inoculación con dos aislados de B. japonicum con alto potencial de fijación de nitrógeno. La Plata: Universidad Nacional de La Plata; 2021. Disponible en: https://sedici.unlp.edu.ar/bitstream/handle/10915/139173/Documento_completo.pdf

20. Franco AD, Estala AM, Santacruz AA, Mendoza JLH. Respuesta de la soya a inoculantes microbianos en el norte de Tamaulipas, México. Rev Mex Cienc Agríc. 2015;6(2). Disponible en: https://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S2007-09342015000200001

21. Romero-Arias A, Ruz-Reyes RM, Nápoles-García MC, Leyva-Rodríguez SL, Baez-González JE. Efecto de la aplicación de cepas de micorrizas en el desarrollo morfoagronómico de Glycine max L. Pastos y Forrajes. 2021;44(1). Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0864-03942021000100003

Descargas

Publicado

04.11.2026

Cómo citar

1.
Inoculación en soja (Glycine max (L.) Merr.) con BPCV (bacterias promotoras de crecimiento vegetal) y hongos micorricicos bajo ambiente controlado en un suelo de Alto Paraná. Rev. Soc. cient. Py. [Internet]. 2026 Nov. 4 [cited 2026 Nov. 11];31:01-7. Available from: https://sociedadcientifica.org.py/ojs/index.php/rscpy/article/view/505

Artículos similares

41-50 de 217

También puede Iniciar una búsqueda de similitud avanzada para este artículo.

Artículos más leídos del mismo autor/a